Micoplasmosis aviar
La micoplasmosis aviar puede ser producida por diversas especies de Mycoplasma, como Mycoplasma gallisepticum, M. synoviae, M. meleagridis y M. iowae(1,2); entre ellos, M. gallisepticum es el más importante en aves de corral, causando enfermedades respiratorias y un descenso en la producción, aunque también es capaz de infectar aves de caza. M. gallisepticum presenta una distribución mundial, transmitiéndose verticalmente entre las aves, a través de los huevos infectados, y horizontalmente por contacto(2). Las aves infectadas son portadoras de M. gallisepticum durante toda la vida y pueden no presentar síntomas hasta que sufren algún estrés.
Los signos clínicos en aves de corral infectadas varían de asintomáticos hasta graves según la cepa infecciosa y otros factores predisponentes. Las infecciones más graves se observan cuando las aves se infectan simultáneamente con el virus de la enfermedad de Newcastle, el de la bronquitis infecciosa, Escherichia coli u otros agentes patógenos. La presencia de Mycoplasma se puede confirmar aislando el organismo en un medio sin células o detectando directamente su ADN en tejidos infectados o muestras de frotis. Bioingentech puede detectar el virus de la enfermedad de Newcastle mediante las siguientes técnicas, avaladas por la Organización mundial de sanidad animal (OIE)(2):
| Técnica | Referencia |
|---|---|
Reacción en cadena de la polimerasa convencional |
Manual de las Pruebas de Diagnóstico y de las Vacunas para los Animales Terrestres de la OIE(1,2,3) |
Reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real |
Manual de las Pruebas de Diagnóstico y de las Vacunas para los Animales Terrestres de la OIE(2,4,5) |
Bibliografía
Laigret F, Deaville J, Bové JM, Bradbury JM. Specific detection of Mycoplasma iowae using polymerase chain reaction. Mol Cell Probes. 1996 Feb;10(1):23-9.
OIE, Código Sanitario para los Animales Terrestres 2010, vols. I & II, 19a ed., 2010.
Ongor H, Kalin R, Karahan M, Cetinkaya B, Akan M. Detection of mycoplasma species in turkeys by culture and polymerase chain reaction. Rev Sci Tech. 2009 Dec;28(3):1103-9.
Raviv Z, Kleven SH. The development of diagnostic real-time TaqMan PCRs for the four pathogenic avian mycoplasmas. Avian Dis. 2009 Mar;53(1):103-7.
Sprygin AV, Andreychuk DB, Kolotilov AN, Volkov MS, Runina IA, Mudrak NS, Borisov AV, Irza VN, Drygin VV, Perevozchikova NA. Development of a duplex real-time TaqMan PCR assay with an internal control for the detection of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae in clinical samples from commercial and backyard poultry. Avian Pathol. 2010 Apr;39(2):99-109.